Цены и отзывы Виджет от SocialMart Скидки Вы можете купить этот товар дешевле, воспользовавшись скидками и акциями магазина, которые указаны рядом с ценой
на товар в этом магазине (на вкладке с ценами). Кроме этого рекомендуем перейти на сайты
магазинов и изучить информацию о товаре – часто продавец указывает дополнительную скидку в карточке товара или
сообщает о ней дополнительно уведомлением на сайте через некоторое время после перехода. История изменения цены
Здесь можно видеть, как изменялась со временем цена на VITEK VT 1251 B.
Линия на графике показывает динамику средней цены, а цветная область – диапазон цен (максимальное и минимальное значение).
Описание
Теперь вы легко приведете в порядок одежду из тканей любой фактуры благодаря паровому утюгу VT-1251 B. С максимальной мощностью 2400 Вт вы легко и быстро прогладите вещи, а благодаря функции вертикального отпаривания вы приведете вещи в идеальный вид, не снимая их с вешалки. Еще легче и эффективнее работать с утюгом позволит регулировка подачи пара, различные температурные режимы и подошва с керамическим покрытием – теперь вы не прожжете любимую одежду даже из самых деликатных тканей. Благодаря функции разбрызгивания вы легко увлажните ткань, которую вы гладите с помощью воды, а функция «Антикапля» предотвратит появление разводов на ткани.
Параметры
city: Moskva
Противокапельная система: Да
Шаровое крепление шнура: Да
Страна: Китай
Самоочистка от накипи: Да
Цвет: синий/белый
Срок службы: 3 года
Подошва утюга: керамика
Вес: 1.
32 кг
Прорезиненная ручка: Да
Гарантия: 1 год
Паровой удар: 140 г
Потребляемая мощность: 2400 Вт
Емкость для воды: 280 мл
Вертикальное отпаривание: Да
Распылитель воды: Да
Индикация готовности к работе: Да
trivialProductName: Утюг
Длина сетевого шнура: 2 м
Штрихкоды: 9120048699040, 6970435715890
Коды производителя: VT-1251(B), 1251-VT-02
VITEK VT 1251 B.
Честные отзывы. Лучшие цены.
На этой странице вы найдёте описание, продавцов и цены, чтобы купить дешевле, видеообзоры и отзывы владельцев об утюге VITEK VT 1251 B. И можете оставить своё мнение о модели в комментариях.
Быстрый Переход к Нужному Месту:
Технические характеристики
Мощность подачи пара
до 100 г/мин
Паровой удар
140 г
Противокапельная система
Да
Вертикальное отпаривание
Да
Распылитель воды
Да
Емкость для воды
280 мл
Подошва утюга
керамика
Индикация готовности к работе
Да
Самоочистка от накипи
Да
Шаровое крепление шнура
Да
Прорезиненная ручка
Да
Потребляемая мощность
2400 Вт
Длина сетевого шнура
2 м
Цвет
синий/белый
Вес
1. 32 кг
Страна
Китай
Гарантия
1 год
Срок службы
3 года
Утюг VITEK VT 1251 B оснащается керамической подошвой. Этот материал обеспечивает равномерный нагрев, помогая избежать повреждения тканей. Кроме того, он легко очищается от пригоревших нитей. МАКСИМАЛЬНАЯ ЭФФЕКТИВНОСТЬ В устройстве предусмотрены функции вертикального отпаривания и парового удара. Благодаря этому оно может быстро справляться с наиболее крупными складками на плотной ткани. ЗАЩИТА ОТ БАКТЕРИЙ Функция ионизации пара помогает уничтожать вредоносные микроорганизмы. Благодаря этому бельё сохраняет приятный запах после глажки. ИДЕАЛЬНАЯ ЧИСТОТА Система автоматического удаления накипи позволяет быстро очищать резервуары утюга, предотвращая их заполнение известковым налётом. УДОБСТВО ИСПОЛЬЗОВАНИЯ Шарнирное крепление провода предотвращает его запутывание при работе с крупными предметами — например, постельным бельём или длинными платьями.
Видео
Отзывы и обзоры
Смотрите видео (выше) и обзоры (ниже), они часто лучше текстовых отзывов. Прочитать больше отзывов или оставить свой вы можете в комментариях к этой странице. Спасибо за ваш отзыв или оценку!
Андрей
Хороший утюг. Работает у нас много, глажки на четверых. Купили месяцев 8 назад и за это время никаких проблем.
Vitek VT-1251 B отзывы покупателей и специалистов на отзовик
Утюг Vitek VT-1251 B
Краткие характеристики:
Регулировка подачи пара есть
Паровой удар есть
Вертикальное отпаривание есть
Функции
Защита от накипи нет
Пользователям нравится:
Общая оценка:
Утюг Vitek VT-1251 B отзывы
Легкий, удобный, недорогой. Ручка удобная. Шнур длинный и на шарнире, не путается во время работы. Мощный паровой удар, Покупкой доволен.
Утюг понравился. Лёгкий, удобный, не течёт, хорошо отпаривает. Удобная услуга такси, доставили через 2 часа после оформления заказа.
Ютюг за свои деньги хороший, быстро нагревается, основные функции работают в норме. Из минусов запах пластика при нагреве, надеюсь, что со временем его не будет.
Хороший утюг за такие деньги.
Единственный минус — шнур коротковат, но такая длина практически у всех моделей, в данной ценовой категории уж точно.
Утюг выполняет свои функции в полном объёме. Покупкой доволен!
Хороший недорогой утюг. Быстро нагревается, хорошо выглаживает все виды тканей. Удобная прорезиненная ручка. Нет функции автоотключения утюга, но мне это и не нужно. Надеюсь прослужит долго.
Татьяна Николаевна Астахова
Хороший утюг, работает исправно, советую
Начитавшись отзывов, решила купить. Тем более, что продавался со скидкой. Из плюсов — длинный шнур на шарнире и быстрый нагрев. А дальше — одни минусы. Справляется хорошо только с натуральными тканями. Синтетику не проглаживает, как были заломы, так и остаются. При увеличении температуры можно подпалить вещь. При каждой глажке запах дешевой пластмассы. Отпаривание так себе. Отпаривать можно только вертикально. При обычной глажке можно только смочить ткань перед утюгом. Это не удобно, т.к. на некоторых тканях остаются следы от смачивания.
Купил этот утюг когда старый сгорел.выбирал долго читал отзывы.с покупкой не прогадал.отлично все разглаживает и не прилипает.очень доволен покупкой.рекомендую.
Цена и качество на 5!!! Мне от утюга нужно чтоб он гладил и отпаривал! Не вижу смысла покупать дорогой с новротами, ну если бы только он САМ гладил)))
Оставьте свой отзыв на Vitek VT-1251 B
Оставить отзыв
Спасибо за отзыв.
Он будет опубликован после проверки модератором!
Характеристики Vitek VT-1251 B
Тип утюг
Материал подошвы керамика
Мощность 2400 Вт
Постоянная подача пара есть
Спрей есть
Цвет бирюзовый, белый
Пар
Регулировка подачи пара есть
Паровой удар есть
Вертикальное отпаривание есть
Функции
Защита от накипи нет
Самоочистка есть
Противокапельная система есть
Автоматическое отключение нет
Конструкция
Объём резервуара для воды 280 мл
Желобок для пуговиц есть
Шарнирное крепление сетевого шнура есть
Все отзывы взяты из открытых источников, либо оставлены посетителями сайта. Администрация сайта otzovik-top ответственности за отзывы не несет.
Ситуационная статистика Kolbrin Vitek 1251 — Fantasy Baseball
Ситуационная статистика Kolbrin Vitek 1251 — Fantasy Baseball — CBSSports.com
# 2B / Бостон Ред Сокс / Опыт: 0ЛЕТ
Высота: 6-2
Вес: 195 фунтов
Возраст: 32 года
Колледж: Нет
Летучие мыши / Броски — / —
В этом сезоне нет профессиональной статистики
Сравнение методов ATB Staph, Rapid ATB Staph, Vitek и E-Test для определения гетерорезистентности к оксациллину у стафилококков, обладающих mecA
J Clin Microbiol. 1998 Jan; 36 (1): 52–57.
Laboratoire de Bactériologie, CHU de Rouen, Hôpital Charles Nicolle, 76031 Rouen Cedex, France
* Автор, отвечающий за переписку. Почтовый адрес: C.H.U. де Руан, Hôpital Charles Nicolle, Лаборатория бактериологии, 1, rue de Germont, 76031 Rouen Cedex, France. Телефон: 33 2 32 88 80 52. Факс: 33 2 32 88 80 24. Электронная почта: rf.neuor-uhc@eigoloiretcab.
Поступило 23 июня 1997 г .; Изменения запрошены 22 августа 1997 г .; Принято 15 октября 1997 г.
Рабочие характеристики методов E-test (AB Biodisk, Solna, Швеция), ATB Staph, Rapid ATB Staph и карты Vitek GPS-503 (bioMérieux, La Balme Les Grottes, Франция) для выявление устойчивости к оксациллину в коллекции стафилококков с высокой долей вызывающих беспокойство штаммов. Были протестированы шестьдесят четыре штамма Staphylococcus aureus и 76 штаммов коагулазонегативного стафилококка. Все штаммы были mecA положительными и были охарактеризованы с помощью скринингового теста на оксациллиновом агаре; 75 (53.6%) были обнаружены гетерогенными с помощью дискового анализа диффузии оксациллина с большим посевным материалом, а МИК оксациллина для 89 (63,6%) составляла ≤32 мкг / мл. Три (4,7%) штамма S. aureus и 25 (32,9%) коагулазонегативных штаммов были классифицированы как чувствительные с помощью Е-теста, как определено Национальным комитетом по клиническим лабораторным стандартам (NCCLS), контрольная точка оксациллина (МПК ≤ 2). мкг / мл). Методом ATB Staph не удалось выявить устойчивость к оксациллину у 7 (11%) изолятов S. aureus и у 32 (42.1%) коагулазонегативные изоляты. МИК для всех этих несовпадающих изолятов, кроме шести, составляла ≤16 мкг / мл. Метод Rapid ATB Staph был протестирован только против штаммов S. aureus и дал 15 (23,4%) результатов ложной чувствительности для штаммов, для которых МИК составляла ≤32 мкг / мл. Система Vitek оказалась наиболее эффективной, так как она не выявила устойчивости к оксациллину только у 3 (4,7%) штаммов S. aureus и 15 (19,7%) коагулазонегативных штаммов, МПК для всех из которых были ≤2 мкг / мл.Эти данные показывают, что (i) эффективность двух систем ATB Staph может быть ограничена, когда распространенность погранично-гетерорезистентных стафилококков высока, и (ii) ненадежность E-теста и методов Vitek для выявления устойчивых коагулазонегативных штаммов. может быть уменьшено за счет возможного пересмотра контрольной точки оксациллина, рекомендованной в настоящее время NCCLS.
Оксациллин-резистентные стафилококки являются основными внутрибольничными патогенами с частой множественной резистентностью, что приводит к чрезмерному использованию гликопептидов в терапии.Одной из приоритетных мер по снижению этого сильного давления антибиотиков является оптимизация выявления устойчивости к оксациллину в клинических лабораториях. Неоднородная устойчивость многих штаммов (4, 9, 24) делает это обнаружение постоянной проблемой для клинических лабораторий. Недавние данные свидетельствуют о том, что гетерорезистентность стафилококков связана с инактивацией регуляторов транскрипции, таких как регулон sar (6) и оперон сигма-B (36). Несколько исследований вызвали озабоченность по поводу неудач обычных методов обнаружения такой устойчивости и привели к различным рекомендациям по усилению проявления устойчивости in vitro (2, 4, 8-11, 17, 20-23, 25, 27, 31, 33, 37).В настоящее время эталонным тестом считается обнаружение гена mecA , ответственного за устойчивость к метициллину практически у всех клинических метициллинрезистентных штаммов стафилококков (9, 24, 28) (2, 4, 7, 17, 23). , 25–28, 32). Несмотря на растущее согласие в литературе по этому методу, он еще не доступен во всех клинических лабораториях, и альтернативным эталонным тестом остается скрининговый тест на оксациллин-агар (1). Как обнаружение mecA , так и скрининг на агаре были использованы в качестве «золотых стандартов» для оценки коммерческих методов (12–14, 16, 22, 25, 26, 33–35, 38).Автоматизированные системы широко используются в клинических лабораториях, но им может не хватать точности для обнаружения гетерогенно устойчивых изолятов (9, 17, 22, 25). Однако за последние несколько лет в нескольких отчетах подчеркивались рабочие характеристики различных быстрых методов, таких как система Rapid ATB Staph (bioMérieux, la Balme-Les Grottes, Франция) (26), панель Rapid MicroScan (Baxter Microscan, Западный Сакраменто, Калифорния) (25, 35), и система Vitek (bioMérieux Vitek, Inc., Хейзелвуд, Миссури).) (13, 25). В частности, Knapp et al. (13) показали полезность системы Vitek для обнаружения изолятов класса с низким уровнем экспрессии Staphylococcus aureus и Staphylococcus epidermidis . Однако эти авторы выразили обеспокоенность по поводу точности системы Vitek для обнаружения погранично-чувствительных изолятов, в которых отсутствует mecA (14). Более того, система Vitek может пропустить значительное количество коагулазонегативных стафилококков, которые имеют ген mecA и для которых МИК оксациллина находится в диапазоне чувствительности (от 1 до 2 мкг / мл) (22).
Целью данного исследования было оценить систему E-test и три автоматизированные системы, используемые в настоящее время во Франции, ATB Staph, Rapid ATB Staph и системы Vitek, а также сравнить их рабочие характеристики для обнаружения оксациллина. устойчивые стафилококки. Эти методы были протестированы на сложной популяции S. aureus и коагулазонегативных штаммов стафилококков, ранее охарактеризованных с помощью ПЦР-амплификации гена mecA и скринингового теста с оксациллиновым агаром.Половина контрольных штаммов была отобрана, потому что они проявляли гетерорезистентность при тестировании с помощью дискового диффузионного анализа с большим посевным материалом.
МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
Испытанные организмы.
Шестьдесят три клинических изолята S. aureus и 76 клинических изолятов коагулазонегативных стафилококков оказались устойчивыми к оксациллину из-за присутствия гена mecA . Штаммы были выделены в период с мая 1995 г. по декабрь 1996 г. из следующих клинических образцов (количество S.aureus и коагулазонегативные изоляты стафилококков, соответственно, в скобках): кровь (11 и 20), урогенитальный тракт (24 и 14), кожно-слизистые образцы (20 и 29), дыхательные пути (6 и 4), суставы жидкость (1 и 1), перикардическая жидкость (0 и 1), спинномозговая жидкость (0 и 1), пищеварительный тракт (1 и 4) и устройство для трансплантации (0 и 2). S. aureus и коагулазонегативные штаммы стафилококков были собраны из 27 и 29 различных отделений, соответственно, в университетской больнице в Руане.Штамм АТСС 43300, mecA -положительный гетерорезистентный штамм S. aureus , использовали в качестве эталонного штамма. Изоляты были идентифицированы как S. aureus или коагулазонегативные стафилококки по морфологии колонии, характеристикам окраски по Граму, реакциям коагулазы и тесту Pastorex Staph Plus (Sanofi Diagnostics Pasteur, Марн-ла-Кокетт, Франция). Штаммы хранили замороженными в глицерине при -70 ° C и субкультивировали для обеспечения чистоты перед тестированием. Все штаммы были устойчивы к оксациллину, как определено с помощью ПЦР-амплификации гена mecA , описанного ниже.Тридцать два (50%) изолятов S. aureus и 45 (59,2%) коагулазонегативных стафилококковых изолятов были намеренно включены в исследование, поскольку они демонстрировали гетерогенный фенотип при тестировании методом дисковой диффузии, как описано ниже. Все изоляты, для которых результаты разных методов расходились, были протестированы дважды.
Амплификация гена
mecA . №
Для приготовления матрицы из клеток стафилококка использовали упрощенную процедуру, не требующую лизиса лизостафина.Два микролитра 2-кратной суспензии клеток МакФарланда нагревали в присутствии 10 мкл Genereleaser (BioVentures, Murfreesboro, Tenn.), Реагента, который секвестрирует продукты лизиса клеток, непосредственно в пробирке для амплификации системы GeneAmp PCR 2400 (Perkin -Элмер Китус, Норуолк, Коннектикут). В соответствии с рекомендациями производителя была проведена программа экстракции ДНК с девятью температурами и одним циклом. Затем в пробирку для ПЦР добавляли 40 мкл смеси реагентов для ПЦР для начала амплификации. ПЦР выполняли с использованием следующих праймеров, ранее разработанных Geha et al.(7): mecA 1 (5′-GTA GAA ATG ACT GAA CGT CCG ATA A) и mecA 2 (5′-CCA ATT CCA CAT TGT TTC GGT CTA A). Смесь реагентов для ПЦР состояла из 200 мкМ дезоксинуклеозидтрифосфатов (dNTP), 10 мМ Трис (pH 8,3), 50 мМ KCl, 1,5 мМ MgCl 2 , концентрации каждого праймера 0,25 мкМ и 1,25 ед. Taq . полимераза (Appligene Oncor, Гейтерсбург, штат Мэриленд). Амплификацию ДНК проводили со следующим профилем термоциклирования: начальная денатурация при 94 ° C в течение 5 мин, затем 30 циклов амплификации (денатурация при 94 ° C в течение 15 с, отжиг при 55 ° C в течение 15 с, удлинение при 72 ° C). ° C в течение 30 с), заканчивая окончательным удлинением при 72 ° C в течение 2 мин.О положительном результате свидетельствует присутствие амплифицированного фрагмента ДНК размером 310 п.н., выявленное с помощью электрофореза в 1,5% агарозном геле при 130 В в течение 45 мин. Результаты были получены в течение 4 часов. Каждый анализ ПЦР включал штамм ATCC 43300 в качестве положительного контроля и воду в качестве отрицательного контроля.
Метод скрининга оксациллинового агара.
Скрининговые тесты агара на чувствительность к оксациллину проводились в соответствии с рекомендациями Национального комитета по клиническим лабораторным стандартам (NCCLS) (21).Для каждого изолята 100 мкл 0,5-кратной суспензии МакФарланда наносили штрихами на чашку с агаром Мюллера-Хинтона с добавлением 4% NaCl и 6 мкг оксациллина на мл. Затем планшеты инкубировали 48 ч при 35 ° C. Любой рост на планшете регистрировали как показатель устойчивости к оксациллину.
Диско-диффузионные испытания.
Диско-диффузионный анализ проводили с дисками 5 мкг оксациллина и посевным материалом 10 8 -КОЕ / мл. Диски помещали на чашки с агаром Мюллера-Хинтона (Becton Dickinson, Cockeysville, Md.) без добавления NaCl; затем планшеты инкубировали в течение 48 ч при 30 ° C. Штаммы считались устойчивыми, когда диаметр подавления был <20 мм, в соответствии с французскими рекомендациями (3), и когда наблюдался какой-либо рост вокруг диска. Штаммы считались гетерогенно устойчивыми, когда наблюдались частичный рост в зоне ингибирования или микроколонии вокруг оксациллинового диска.
Определение MIC.
МИК оксациллина определяли с помощью Е-теста (AB Biodisk, Солна, Швеция), выполняемого в соответствии с рекомендациями производителя.Тест-полоски E помещали на чашки с агаром Мюллера-Хинтона, содержащим 2% NaCl, который усиливает рост микроколоний и выражение устойчивости. Эти чашки инокулировали, протирая поверхности суспензией 0,5 × McFarland для штаммов S. aureus или суспензией 1 × McFarland для коагулазонегативных штаммов стафилококков. Затем планшеты инкубировали при 35 ° C в течение 24 часов.
Система ATB Staph и система Rapid ATB Staph.
Тест на чувствительность был проведен в соответствии с рекомендациями производителя (bioMérieux).Вкратце, 0,5 × эмульсия МакФарланда изолированных колоний в стерильном физиологическом растворе была добавлена к 7 мл среды ATB (бульон Мюллера-Хинтона с добавлением 5% NaCl). Конечный посевной материал переносили в лунку с оксациллином (2 мкг / мл) и инкубировали в течение 24 ч при 35 ° C. Система Rapid ATB Staph была протестирована только против штаммов S. aureus .
Система Vitek.
Тестирование чувствительности с помощью карты Vitek GPS-503 (bioMérieux) проводилось в соответствии с инструкциями производителя.Карты инокулировали 0,5-кратной суспензией клеток по МакФарланду и обрабатывали в ридере-инкубаторе Vitek 120.
РЕЗУЛЬТАТЫ
Все изоляты, проанализированные в этом исследовании, несли ген mecA . Степень согласия между результатами эталонных тестов (ПЦР-амплификация гена mecA и скрининговый тест на оксациллин-агар) и результатов определения МИК E-test и автоматизированных систем показана в таблице. Противоречивые результаты, полученные по крайней мере одним из методов тестирования чувствительности, представлены в таблице для S.aureus и в таблице для коагулазонегативных стафилококковых изолятов.
ТАБЛИЦА 1
Согласование между тестом на оксациллин E, ATB Staph, Rapid ATB Staph и системами Vitek и эталонными методами (ПЦР-амплификация гена mecA и скрининг на оксациллин-агар) для S. aureus и коагулазонегативные стафилококковые изоляты
Эталонный метод
Изолят
Количество штаммов с совпадающими результатами (% совпадения) для указанной системы
E-test
ATB Staph
Rapid ATB Staph
Vitek
ПЦР mecA
S. aureus
61 (95,3)
57 (89,0)
49 (76,6)
61 (95,3)
Коагулазонегативные стафилококки
51 (67,116)
— a
61 (80,3)
Отсев агара
S. aureus
63 (98,4)
59 (92,2)
51 (79,7)
63 (98146)
Коагулазонегативные стафилококки
55 (72.4)
48 (63,2)
—
65 (85,5)
ТАБЛИЦА 2
Характеристики 16 штаммов S. aureus , ошибочно классифицированных как чувствительные к оксациллину, по крайней мере одним из методов тестирования на чувствительность
Изолят
Результат c указанного эталонного метода
Результат указанного метода определения чувствительности к оксациллину
Характеристики 36 коагулазонегативных штаммов стафилококков, ошибочно классифицированных как чувствительные к оксациллину, по крайней мере, одним из методов тестирования на чувствительность
Результат
эталонный метод
Результат указанного метода определения чувствительности к оксациллину
R 902 900 — 9019 9019 9019 положительный с. Изоляты aureus , для которых МПК оксациллина составляли 0,38 и 1 мкг / мл, не росли на планшете для скрининга с оксациллиновым агаром, но проявляли гетерорезистентность при тестировании с помощью дискового диффузионного анализа с большим посевным материалом (таблица). Из 76 mecA -положительных коагулазонегативных штаммов стафилококков 4 не росли на скрининговом планшете с оксациллиновым агаром (таблица). Среди этих четырех несовместимых изолятов два, для которых МИК составляли 0,25 и 0,75 мкг / мл, не были обнаружены другими методами, а другие, для которых МИК составляли 1 и 2 мкг / мл, были обнаружены с помощью диско-диффузионного анализа. через 48 ч инкубации (таблица).
Распределение МПК оксациллина, определенное с помощью Е-теста, представлено на рис. MIC для эталонного штамма ATCC 43300 составлял 16 мкг / мл. МИК оксациллина для 43 (67%) штаммов S. aureus и 46 (60,5%) коагулазонегативных штаммов стафилококка составляла ≤32 мкг / мл. В то время как МПК оксациллина для большинства гетерогенных штаммов S. aureus составляли около 16 мкг / мл, МПК для гетерогенных коагулазонегативных штаммов стафилококков имели бимодальное распределение (рис.). Согласно контрольной точке NCCLS (≤2 мкг / мл), Е-тест выявил 3 штаммов S. aureus (таблица) и 25 коагулазонегативных штаммов стафилококков (таблица) как чувствительные штаммы. Таким образом, процент совпадения результатов Е-теста с ПЦР-амплификацией гена mecA и скрининговым тестом на оксациллиновом агарном агаре составил 95,3 и 98,4% соответственно для штаммов S. aureus и 67,1 и 72,4% соответственно. , для коагулазонегативных штаммов (таблица).
Гистограммы распределения МИК оксациллина, определенных в Е-тесте, для mecA -положительных S.aureus и коагулазонегативные штаммы стафилококков, проанализированные в исследовании. Заштрихованные столбцы указывают на неоднородно устойчивые штаммы. Вертикальные пунктирные линии обозначают контрольную точку для различения устойчивых штаммов от чувствительных, рекомендованных NCCLS.
Система ATB Staph дала результаты в течение 18 часов для всех штаммов. По сравнению с ПЦР-амплификацией гена mecA система ATB Staph не смогла выявить резистентность в 7 (11%) изолятах S. aureus (таблица) и 32 (42.1%) коагулазонегативные изоляты стафилококков (таблица). Среди семи ложно восприимчивых изолятов S. aureus пять проявили гетерорезистентность при тестировании методом дисковой диффузии, а МИК для шести были ≤16 мкг / мл (таблица). Среди 32 коагулазонегативных штаммов стафилококков с необнаруженной резистентностью 24 проявили гетерорезистентность; 22 были восприимчивы к оксациллину (МПК оксациллина ≤ 2 мкг / мл), 5 были пограничными (МПК ≤ 16 мкг / мл) и 5 (15,6%) были высокорезистентными (МПК> 256 мкг / мл) (таблица).
Система Rapid ATB Staph была протестирована исключительно против штаммов S. aureus в соответствии с рекомендациями производителя. Результаты были предоставлены в течение 5 часов для всех изолятов. Система экспрессии Rapid ATB дала 15 (23,4%) ложных результатов (таблица). Таким образом, процент согласия метода Rapid ATB Staph с амплификацией ПЦР гена mecA и с тестом на агаровой пластине составил 76,6 и 79,7% соответственно (таблица). МИК оксациллина для всех несовпадающих штаммов, идентифицированных в этом сравнении результатов, составляла ≤32 мкг / мл (таблица).
В карте Vitek GPS-503 не удалось вырастить штамм. Результаты были получены в течение 8 часов для 62 (96,9%) изолятов S. aureus . Для двух штаммов S. aureus система Vitek дала результаты в течение 9 и 13 часов. Для коагулазонегативных стафилококков окончательные отчеты были получены в течение 6-8 часов для 63 (82,9%) изолятов и потребовалось 12 часов для 6 изолятов. Среднее время, необходимое для создания окончательного отчета, было немного больше для изолятов S. aureus (8 ч), чем для коагулазонегативных изолятов стафилококка (7.6 ч). Результаты по чувствительности к оксациллину, полученные с помощью системы Vitek, коррелировали с наличием гена mecA для 61 (95,3%) изолята S. aureus и 61 (80,3%) коагулазонегативного изолята стафилококка (таблица). Процент соответствия между системой Vitek и скрининговым тестом на оксациллин составил 98,4 и 85,5% для S. aureus и коагулазонегативных изолятов стафилококка соответственно (таблица). MIC для всех изолятов, которые не были обнаружены системой Vitek, составляли ≤2 мкг / мл, и все изоляты проявляли гетерорезистентность, за исключением штаммов 2910 и 1089, которые не проявляли никакой устойчивости.Ни один из этих изолятов не был обнаружен системой ATB Staph или Rapid ATB Staph (таблицы и).
ОБСУЖДЕНИЕ
Целью данного исследования было сравнение эффективности различных коммерческих и широко используемых методологий обнаружения гетерорезистентности к оксациллину. ПЦР-амплификация гена mecA и скрининговый тест на оксациллин использовались в качестве «золотых стандартов». МИК оксациллина определяли с помощью Е-теста. В предыдущих оценках автоматизированных методов тестирования чувствительности (13, 37, 38) проблема заключалась в основном в точном определении устойчивости к оксациллину, а не в ложной устойчивости к оксациллину. Поэтому мы сосредоточили настоящую работу на коллекции mecA -положительных стафилококков. Пятьдесят процентов изолятов были отобраны для исследования, потому что они показали гетерогенный фенотип при тестировании с помощью дискового диффузионного анализа с большим посевным материалом. Следовательно, вся популяция штаммов, протестированных в этом исследовании, не имеет эпидемиологического значения и не отражает относительную частоту стафилококков с гетерогенными фенотипами в нашей больнице. Для скрининга гетерорезистентных изолятов мы выполнили метод дисковой диффузии в соответствии с французскими рекомендациями, т. Е.е., с дисками 5 мкг оксациллина и пластинами с бессолевым агаром Мюллера-Хинтона, инкубированными при 30 ° C, за исключением того, что мы увеличили посевной материал (10 8 вместо 10 7 КОЕ / мл) и время инкубации ( 48 вместо 24 ч). Хотя мы не выполняли метод дисковой диффузии дифференциального посевного материала (4), мы наблюдали, что большинство наших гетерорезистентных изолятов не были обнаружены, когда анализ проводился с посевным материалом 10 6 (данные не показаны). Это и тот факт, что МПК оксациллина для 43 (67%) S.aureus и 46 (60,5%) коагулазонегативных стафилококковых изолятов были низкими (≤32 мкг / мл), что свидетельствует о преобладании гетерогенно устойчивых штаммов, принадлежащих к классу фенотипической экспрессии 1 или 2 (4, 28).
Полезность обнаружения гена mecA для обнаружения устойчивости к оксациллину была широко продемонстрирована (2, 7, 8, 10, 17, 25–32). Были успешно использованы несколько методов, основанных на ПЦР (7, 27, 29, 30, 32). В настоящей работе приготовление матрицы из стафилококковых клеток было упрощено путем нагревания клеток в присутствии реагента, который секвестрирует продукты лизиса клеток (Genereleaser; BioVentures Inc.). Эта процедура проста и столь же эффективна, как лизис лизостафина. Более того, тот факт, что все реакции нагревания можно проводить на термоциклере в одной пробирке, может способствовать автоматизации амплификации ПЦР.
В литературе растет консенсус в отношении того, что скрининговый тест на оксациллиновом агаровой пластине (1, 21) является наиболее надежным фенотипическим тестом для определения устойчивости к оксациллину (7–9, 11, 17, 23, 25, 26, 31, 37). В настоящей оценке было обнаружено соответствие между результатами ПЦР-амплификации mecA и результатами скринингового теста на агар, за исключением двух S.aureus и четыре коагулазонегативных стафилококковых изолята. Неожиданно оказалось, что эти два штамма S. aureus и два из четырех коагулазонегативных штаммов стафилококков были обнаружены с помощью дискового диффузионного анализа оксациллина с большим посевным материалом (таблицы и). Такие несоответствия могут быть устранены путем повторной оценки включения NaCl в чашки с оксациллиновым агаром, как предполагают другие исследователи (8, 11). Отсутствие какого-либо роста коагулазонегативных штаммов стафилококков 2910 и 1089 может быть связано с отсутствием экспрессии гена mecA .Функционален ли ген mecA и индуцируется ли продукция PBP 2 ‘в этих штаммах, не исследовалось. Такие mecA -положительные штаммы, чувствительные к оксациллину, для которых МИК составляли от 0,25 до 2 мкг / мл, были обнаружены в других исследованиях (7, 11, 22, 27). Снижение устойчивости к бета-лактамам зависит от подавления транскрипции mecA (19) и находится под влиянием вспомогательных генов, таких как mecR , mecI (15) и fem (5).Однако эти скрытые метициллин-устойчивые штаммы, также называемые пре-MRSA (10, 15), потенциально обладают высокой устойчивостью, поскольку они могут генерировать субклоны с высокой устойчивостью in vitro (10, 27). Следовательно, их обнаружение, по-видимому, определяет выбор антибиотикотерапии и зависит только от обнаружения гена mecA .
В этом исследовании МПК оксациллина определялись с помощью Е-теста, который был признан надежной альтернативой традиционным методам разбавления агаром или бульоном (11, 12, 32, 34).Мы обнаружили, что Е-тест был приемлемым для выявления устойчивых к оксациллину изолятов S. aureus , как показано совпадением 98,4% с результатами скринингового планшета с оксациллиновым агаром (таблица). Напротив, при тестировании коагулазонегативных стафилококковых изолятов мы обнаружили только 67,1 и 72,4% совпадения с ПЦР-амплификацией mecA и скрининг-тестом на агар, соответственно. Однако 25 коагулазонегативных штаммов стафилококков были неверно интерпретированы как чувствительные с помощью Е-теста, поскольку МПК оксациллина для них варьировались от 0.125 до 2 мкг / мл. Такие mecA -положительные коагулазонегативные штаммы стафилококков, для которых МИК оксациллина сгруппированы около 1 или 2 мкг / мл, также наблюдались с использованием обычных методов определения МИК (12, 17, 18). В соответствии с этими предыдущими исследованиями, наши результаты предполагают, что критерии интерпретации МИК NCCLS могут недооценивать устойчивость к оксациллину среди коагулазонегативных штаммов стафилококков. Использование контрольной точки оксациллина ≥0,5 мкг / мл для устойчивости, ранее предложенное McDonald et al.(18), привело бы нас к пересмотру интерпретации МИК 16 изолятов стафилококка, отрицательных по коагулазе, в нашем исследовании и увеличило бы согласованность Е-теста с ПЦР гена mecA до 94,7%.
Автоматизированные методики тестирования чувствительности используются в большом количестве клинических лабораторий. Многоцентровое исследование, сфокусированное на обнаружении эталонного штамма класса низкого уровня экспрессии ATCC 43300 (16), показало, что автоматизированные методы в целом более надежны, чем метод дисковой диффузии.Однако в этом исследовании было представлено много типов оборудования и предварительно подготовленных панелей MIC, а количество лабораторий, которые использовали какой-либо один метод, было слишком маленьким, чтобы можно было проводить сравнения между различными системами. В данной работе мы сравнили рабочие характеристики систем ATB Staph, Rapid ATB Staph и карточных систем Vitek GPS-503. Системе ATB Staph не удалось выявить устойчивость к оксациллину у 7 (11%) изолятов S. aureus и 32 (42,1%) коагулазонегативных изолятов стафилококков.МИК для ложно чувствительных штаммов составляли ≤16 мкг / мл, за исключением одного штамма S. aureus (таблица) и пяти коагулазонегативных штаммов стафилококков (таблица). Учитывая коллекцию штаммов, протестированных в этом исследовании, эффективность системы ATB Staph можно считать приемлемой для тестирования штаммов S. aureus , что согласуется с высокой чувствительностью, о которой сообщают другие исследователи (38). Напротив, система ATB Staph дала высокий уровень ложных результатов среди коагулазонегативных штаммов стафилококков, поскольку ее результаты коррелировали с присутствием гена mecA для 44 (57.9%) только коагулазонегативных штаммов стафилококков (таблица). Об этой недостаточной точности коммерческих систем для обнаружения оксациллин-резистентных коагулазонегативных стафилококков также сообщалось для BBL Crystal MRSA (33) и быстрых флуорогенных систем MicroScan (35).
Система Rapid ATB Staph, оцененная только для штаммов S. aureus , ошибочно принята за чувствительные 15 (23,4%) штаммов, для которых все МПК были ≤32 мкг / мл (таблица). Следовательно, система Rapid ATB Staph была менее надежной, чем система ATB Staph, о чем свидетельствует ее более низкий процент совпадения с амплификацией ПЦР гена mecA (76.6 против 89,0%) (таблица). Несмотря на предыдущие данные с точностью 97–99% для системы Rapid ATB Staph (26), мы пришли к выводу, что точность может быть неприемлемой, если распространенность гетерогенно устойчивых изолятов высока.
Среди протестированных здесь автоматизированных систем система Vitek оказалась наиболее надежной при обнаружении гетерорезистентности к оксациллину. Ни один из 3 (4,7%) штаммов S. aureus и 15 (19,7%) коагулазонегативных штаммов стафилококка, ошибочно обнаруженных системой Vitek, не оказался устойчивым к системе ATB Staph.Более того, МИК для всех этих штаммов составляли ≤2 мкг / мл, тогда как системы ATB неправильно классифицировали многие штаммы, для которых МИК были> 2 мкг / мл (Таблицы и). Учитывая процент совпадения системы Vitek с ПЦР-амплификацией гена mecA (95,3%), мы обнаружили, что это надежный метод обнаружения устойчивых к оксациллину штаммов S. aureus . В отношении коагулазонегативных стафилококковых изолятов сделать аналогичный вывод сложно, поскольку соответствие системы Vitek с ПЦР-амплификацией гена mecA составляет всего 80.3% (таблица). Об этой неспособности системы Vitek обнаружить устойчивость к оксациллину у некоторых mecA -положительных коагулазонегативных штаммов стафилококков сообщили другие исследователи (22, 25). Однако в нашем исследовании недостаточная точность системы Vitek для выявления оксациллин-резистентных коагулазонегативных стафилококков связана с большим количеством коагулазонегативных штаммов стафилококков, для которых МПК составляет ≤2 мкг / мл. Ложно-чувствительные результаты для штаммов, для которых МИК ≤2 мкг / мл, также наблюдались с помощью системы Microscan (25).Если бы критерии интерпретации МИК NCCLS были пересмотрены для коагулазонегативных штаммов стафилококков, как предлагалось ранее (18), последующий пересмотр программного обеспечения экспертной системы, вероятно, повысил бы точность таких автоматизированных методологий. Например, если интерпретацию системы Vitek можно было бы модифицировать на основе контрольной точки оксациллина ≥0,5 мкг / мл для устойчивости, как предложено выше, 12 из 15 коагулазонегативных стафилококковых изолятов, первоначально не обнаруженных системой Vitek, можно было бы классифицировать как стойкий.Тогда согласие системы Vitek с ПЦР гена mecA составит 96%.
В этом исследовании мы не оценивали способность коммерческих систем различать пограничные чувствительные к оксациллину и резистентные стафилококки. Недавно Knapp et al. сообщили о способности системы Vitek дифференцировать погранично-восприимчивые изоляты S. aureus от гетерогенных устойчивых штаммов класса 1 и 2 и обнаружили правильную классификацию с помощью карты Vitek для 86% штаммов (14).Что касается обнаружения стафилококков с пограничной устойчивостью к оксациллину, наши данные подчеркивают превосходство системы Vitek над системами ATB Staph и Rapid ATB Staph. Однако, учитывая, что система Vitek не смогла обнаружить mecA -позитивные стафилококки, для которых МПК оксациллина составляла ≤2 мкг / мл, подтверждающий тест остается важным для лечения серьезных инфекций. Это подтверждение может быть получено с помощью скринингового теста на оксациллин-агаровой пластине, доступного для всех клинических лабораторий.Однако этот тест требует 48 часов, чтобы подтвердить чувствительность к оксациллину. В качестве альтернативы, экспресс-тест BBL Crystal MRSA дает результаты в течение 4 часов, но он может неправильно классифицировать некоторые пограничные и / или гетерогенно устойчивые штаммы (38), и он менее надежен для коагулазонегативных стафилококков, чем для изолятов S. aureus (33). ). Наконец, наиболее быстрой и надежной процедурой, обеспечивающей окончательное различение таких изолятов, остается ПЦР-амплификация гена mecA .
В заключение, среди коммерческих систем, сравниваемых в настоящем исследовании, мы обнаружили, что E-тест и система Vitek были наиболее точными при обнаружении гетерорезистентности к оксациллину у стафилококков. Возможный пересмотр контрольной точки 2 мкг / мл оксациллина NCCLS был ранее предложен для коагулазонегативных штаммов стафилококков (18) и может снизить относительную неэффективность этих методов для таких штаммов.
БЛАГОДАРНОСТЬ
Мы благодарны Жан-Луи Понсу за помощь в подготовке рукописи.
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
1. Арчер Г. Л., Пеннелл Э. Определение устойчивости стафилококков к метициллину с помощью ДНК-зонда. Антимикробные агенты Chemother. 1990; 34: 1720–1724. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 2. Бигнарди Г. Э., Вудфорд Н., Чапман А., Джонсон А. П., Спеллер Д. С. Обнаружение гена mecA и фенотипическое определение устойчивости у изолятов Staphylococcus aureus с пограничной или низкой устойчивостью к метициллину. J Antimicrob Chemother. 1996. 37: 53–63.[PubMed] [Google Scholar] 3. Comité de l’Antibiogramme de la Société Française de Microbiologie. Критика Valeurs за антибиограмму. Bull Soc Fr Microbiol. 1996. 11: 315–320. [Google Scholar] 4. de Lencastre H, Sa Figueiredo A.M, Urban C, Rahl J, Tomasz A. Множественные механизмы устойчивости к метициллину и улучшенные методы обнаружения в клинических изолятах Staphylococcus aureus . Антимикробные агенты Chemother. 1991; 35: 632–639. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 5. де Ленкаср Х., Томаш А. Повторная оценка количества вспомогательных генов, необходимых для экспрессии высокой устойчивости к метициллину у Staphylococcus aureus . Антимикробные агенты Chemother. 1994; 38: 2590–2598. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 6. Duran S.P, Kayser FH, Berger-Bächi B. Влияние sar и agr на устойчивость к метициллину у Staphylococcus aureus . FEMS Microbiol Lett. 1996. 141: 255–260. [PubMed] [Google Scholar] 7. Геха Д. Дж., Уль Дж. Р., Густаферро К. А., Персинг Д. Х.Мультиплексная ПЦР для идентификации метициллин-резистентных стафилококков в клинической лаборатории. J Clin Microbiol. 1994; 32: 1768–1772. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 8. Гербердинг Дж. Л., Миик С., Лю Х. Х., Чемберс Х. Ф. Сравнение обычных тестов на чувствительность с прямым обнаружением пенициллин-связывающего белка 2a в пограничных оксациллин-устойчивых штаммах Staphylococcus aureus . Антимикробные агенты Chemother. 1991; 35: 2574–2579. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 9.Hackbarth C J, Chambers H F. Метициллин-резистентные стафилококки: методы обнаружения и лечения инфекций. Антимикробные агенты Chemother. 1989; 33: 995–999. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 10. Хирамацу К., Кихара Х., Йокота Т. Анализ погранично-устойчивых штаммов метициллин-устойчивого Staphylococcus aureus с использованием полимеразной цепной реакции. Microbiol Immunol. 1992; 36: 445–453. [PubMed] [Google Scholar] 11. Хуанг М. Б., Гей Т. Е., Бейкер С. Н., Банерджи С. Н., Теновер Ф. С. Для тестирования чувствительности стафилококков с помощью оксациллина при использовании методов разбавления на основе агара требуется два процента хлорида натрия.J Clin Microbiol. 1993; 31: 2683–2688. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 12. Иевен М., Янсенс Х., Урси Д., Верховен Дж., Гуссенс Х. Быстрое определение устойчивости к метициллину у коагулазонегативных стафилококков с помощью коммерчески доступного флуоресцентного теста. J Clin Microbiol. 1995; 33: 2183–2185. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 13. Кнапп К. С., Людвиг М. Д., Вашингтон Дж. А. Оценка метода дифференциальной диффузии посевного материала и карты Vitek GPS-SA для обнаружения стафилококков, устойчивых к оксациллину.J Clin Microbiol. 1994; 32: 433–436. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 14. Кнапп К. С., Людвиг М. Д., Вашингтон Дж. А., Чемберс Х. Ф. Оценка карты Vitek GPS-SA для тестирования оксациллина против погранично-чувствительных стафилококков, у которых отсутствует mec . J Clin Microbiol. 1996; 34: 1603–1605. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 15. Kuwohara-Arai K, Kondo N, Hori S, Tateda-Susuki E, Hiramatsu K. Подавление устойчивости к метициллину в mecA -содержащем пре-метициллин-резистентном штамме Staphylococcus aureus вызвано репрессией, опосредованной mecI производства ПБП2 ′.Антимикробные агенты Chemother. 1996. 40: 2680–2685. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 16. Маккензи А. М., Ричардсон Х, Миссет П., Вуд Д. Е., Гровс Д. Дж. Точность регистрации метициллин-устойчивого Staphylococcus aureus в провинциальной программе контроля качества: 9-летнее исследование. J Clin Microbiol. 1993; 31: 1275–1279. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 17. Маккензи А. М., Ричардсон Н., Ланниган Р., Вуд Д. Доказательства того, что дисковый тест Национального комитета по клиническим лабораторным стандартам менее чувствителен, чем экранный планшет, для обнаружения устойчивых к метициллину Staphylococcus с низким уровнем экспрессии.J Clin Microbiol. 1995; 33: 1909–1911. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 18. Макдональд С. Л., Махер В. Е., Фасс Р. Дж. Пересмотренная интерпретация МИК оксациллина для Staphylococcus epidermidis на основе обнаружения mecA . Антимикробные агенты Chemother. 1995; 39: 982–984. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 19. Mempel M, Feucht H, Ziebuhr W., Endres M, Laufs R, Grüter L. Отсутствие транскрипции mecA в вариантах с отрицательной фазой слизи метициллин-устойчивых Staphylococcus epidermidis .Антимикробные агенты Chemother. 1994; 38: 1251–1255. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 20. Национальный комитет по клиническим лабораторным стандартам. Стандарты производительности для тестов на чувствительность к антимикробным препаратам. Утвержденный стандарт М2-А5. Вилланова, Пенсильвания: Национальный комитет по клиническим лабораторным стандартам; 1993. [Google Scholar] 21. Национальный комитет по клиническим лабораторным стандартам. Методы разведения тестов на чувствительность к противомикробным препаратам для бактерий, которые растут в аэробных условиях. 3-е изд. Утвержден стандарт М7-А3.Вилланова, Пенсильвания: Национальный комитет по клиническим лабораторным стандартам; 1993. [Google Scholar] 22. Рамотар К., Джессамин П., Бобровска-Гацек М., Вудс В., Култиш И., Той Б. Тезисы 96-го Общего собрания Американского общества микробиологии, 1996 г. Вашингтон, округ Колумбия: Американское общество микробиологии; 1996. Выявление устойчивости к метициллину у коагулазонегативных стафилококков (ЦНС), abstr. С-177; п. 32. [Google Scholar] 23. Ричард П., Мейран М., Карпентье Э., Табаут А., Друген Х. Б. Сравнение фенотипических методов и гибридизации ДНК для обнаружения метициллин-устойчивого Staphylococcus aureus .J Clin Microbiol. 1994; 32: 613–617. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 24. Ryffel C, Kayser FH, Berger-Bächi B. Корреляция между регуляцией транскрипции mecA и экспрессией устойчивости к метициллину у стафилококков. Антимикробные агенты Chemother. 1992; 36: 25–31. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 25. Скульник М., Симор А.Е., Грегсон Д., Патель М., Смолл Г. В., Крейсвирт Б., Хэтховей Д., Лоу Д. Оценка коммерческой и стандартной методологии определения чувствительности к оксациллину у Staphylococcus aureus .J Clin Microbiol. 1992; 30: 1985–1988. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 26. Струленс М. Дж., Нонхофф С., Ван дер Аувера П., Мертенс Р., Серрюйс Е. Группа для депистажа; l’Etude et la Prevention des Infections Hospitalières-Groep Ter Opsporing; Studie en Preventie van Infecties in de Ziekenhuizen. Оценка Rapid ATB Staph для 5-часового тестирования чувствительности к антимикробным препаратам Staphylococcus aureus . J Clin Microbiol. 1995; 33: 2395–2399. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 27.Tokue Y, Shoji S, Satoh K, Watanabe A, Motomiya M. Сравнение анализа полимеразной цепной реакции и обычного микробиологического метода обнаружения метициллин-устойчивого Staphylococcus aureus . Антимикробные агенты Chemother. 1992; 36: 6–9. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 28. Томаш А., Нахман С., Лиф Х. Стабильные классы фенотипической экспрессии в метициллин-резистентных клинических изолятах стафилококков. Антимикробные агенты Chemother. 1991; 35: 124–129. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 29.Убаката К., Накагами С. , Нитта А., Ямане А., Каваками С., Сугиура М., Конно М. Быстрое обнаружение гена mecA в метициллин-устойчивых стафилококках путем ферментативного обнаружения продуктов полимеразной цепной реакции. J Clin Microbiol. 1992; 30: 1728–1733. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 30. Юнал С., Хоскинс Дж., Флокович Дж. Э., Ву Си Е, Престон Д. А., Скатруд П. Л. Обнаружение метициллин-устойчивых стафилококков с помощью полимеразной цепной реакции. J Clin Microbiol. 1992; 30: 1685–1691.[Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 31. Юнал С., Вернер К., ДеГиролами П., Барсанти Ф., Элиопулос Г. Сравнение тестов для обнаружения метициллин-устойчивого Staphylococcus aureus в лаборатории клинической микробиологии. Антимикробные агенты Chemother. 1994; 38: 345–347. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 32. Вануффель П., Джиджи Дж., Эззедин Х, Вандеркам Б., Делми М., Воутерс Дж., Гала Дж. Л.. Специфическое обнаружение метициллин-устойчивых видов Staphylococcus с помощью мультиплексной ПЦР. J Clin Microbiol. 1995; 33: 2864–2867. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 33. Wallet F, Roussel-Delvallez M, Courcol R J. Выбор рутинного метода определения устойчивости к метициллину у стафилококков. J Antimicrob Chemother. 1996; 37: 901–909. [PubMed] [Google Scholar] 34. Веллер Т. М., Крук Д. В., Кроу М. Р., Ибрагим В., Пеннингтон Т. Х., Селкон Дж. Б. Тестирование стафилококков на чувствительность к метициллину с помощью Etest и сравнение с разведением в агаре и обнаружением mecA . J Antimicrob Chemother.1997; 39: 251–253. [PubMed] [Google Scholar] 35. Вудс Г. Л., Латемпл Д., Круз С. Оценка грамположительных панелей MicroScan для обнаружения стафилококков, устойчивых к оксациллину. J Clin Microbiol. 1994; 32: 1058–1059. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 36. Wu S, de Lencastre H, Tomasz A. Sigma-B, предполагаемый оперон, кодирующий альтернативный сигма-фактор Staphylococcus aureus РНК-полимеразы: молекулярное клонирование и секвенирование ДНК. J Bacteriol. 1996; 178: 6036–6042. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 37.Йорк М. К., Гиббс Л., Чехаб Ф., Брукс Г. Ф. Сравнение ПЦР-обнаружения mecA со стандартными методами тестирования чувствительности для определения устойчивости к метициллину у коагулазонегативных стафилококков. J Clin Microbiol. 1996; 34: 249–253. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 38. Zambardi G, Fleurette J, Schito GC, Auckenthaler R, Bergogne-Berezin E, Hone R, King A, Lenz W, Lohner C, Makristhatis A, Marco F, Müller-Serieys C, Nonhoff C, Phillips I, Rohner P, Rotter М., Шааль К.П., Струеленс М., Вибан А.Европейская многоцентровая оценка коммерческой системы для идентификации метициллин-устойчивого Staphylococcus aureus . Eur J Clin Microbiol. 1996; 15: 747–749. [PubMed] [Google Scholar]
Amazon.com: Vitek CCTV VTD-A4F / IW Alpha Series 620tvl Стационарный купольный купол 3,6 мм для установки в помещении с WDR, OSD и технологией DSS для ночного наблюдения — 12VDC
Марка
Витек видеонаблюдение
Цвет
белый
Тип оповещения
Только движение
Размеры изделия ДхШхВ
5. 6 х 5,8 х 4,6 дюйма
Напряжение
12 Вольт
Убедитесь, что это подходит
введя номер вашей модели.
620TV линий разрешения
1/3 «Sony SuperHAD II CCD
Фиксированный объектив 3,6 мм
Расширенные функции экранного меню: WDR, 3D DNR, Night Watch DSS Low Light Color Technology, DIS, Sens-up, Motion Detection, Privacy